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1.
植物遗传多样性一直以来是种质资源研究的热点。为揭示苦玄参栽培种质的遗传多样性,该研究从苦玄参常年栽培种中根据形态学性状差异选择40个株系,以产量、药效物质含量及茎、叶、花等形态学性状为指标,进行物种变异和遗传多样性分析,并对其进行聚类分析,获取各株系遗传亲缘关系。结果表明:苦玄参苷IA和IB含量的遗传变异系数较高,分别为24.225%和17.853%;遗传多样性指数高,分别为1.920和2.075。产量遗传变异系数较低,仅为3.637%,但遗传多样性指数较高,达到1.884。其余表型性状指标遗传变异系数均较高,其中花色高达127.794%。数值型性状具有较高的遗传多样性,均大于1,但描述型指标遗传多样性指标较低,均小于1。聚类分析可将供试材料分为4个大的类群:第Ⅰ类群共有7个株系,此类群产量性状及相关指标平均数较高;第Ⅱ类群有8个株系,茎节长度最长,其余指标中等偏下;第Ⅲ类群数量最多,有20个株系,各指标均较低;第Ⅳ类群有5个株系,苦玄参苷含量和产量均较高,综合指标比较优。相关分析结果表明,苦玄参苷IA的含量与叶缘性状具有显著相关,产量性状与茎节长度、一级分枝和末级分枝数具有极显著相关,选择优良种质应注重该4个性状的选择。该研究结果表明目前苦玄参栽培种具有广泛的变异和较高的遗传多样性,为苦玄参资源的利用提供了参考依据。  相似文献   
2.
桂南地区苦玄参药材RP-HPLC指纹图谱研究   总被引:3,自引:2,他引:1       下载免费PDF全文
采用反相HPLC法测定了广西梧州、龙州、苍梧、越南等多产地12批苦玄参药材指纹图谱,并对不同产地的苦玄参指纹图谱进行比较。色谱条件为:LunaC18(4.6×250mm,5μm)色谱柱,乙腈-水梯度洗脱,流速1.0mL/min,检测波长254nm,柱温25℃。结果12批苦玄参样品指纹图谱共标定了16个分离度良好的共有峰,方法的精密度、稳定性、重复性均符合国家相关规定,可作为控制苦玄参药材质量的定性标准。  相似文献   
3.
苦玄参药材中苦玄参苷ⅠA和ⅠB的含量分析   总被引:1,自引:0,他引:1  
采用HPLC法对不同产地的苦玄参药材主成分苦玄参苷ⅠA和ⅠB的含量进行分析,发现苦玄参苷ⅠB含量高于苦玄参苷ⅠA;色谱条件:Waters C18(4.6mmi.d.×250mm,5μm)色谱柱,流动相∶乙睛∶水=36?64(体积比),流速为0.8mL/min,检测波长为264nm。苦玄参苷ⅠA、ⅠB分别在0.05~0.50mg/mL和0.072~0.720mg/mL与峰面积有良好的线性关系。苦玄参苷ⅠA的线性回归方程Y=13658X-92.72(r=0.9993),平均回收率为100.58%(n=5),相对标准偏差(RSD)为1.86%;苦玄参苷ⅠB的线性回归方程Y=5258.9X-41.01(r=0.9994),平均回收率为101.15%(n=5),相对标准偏差(RSD)为1.31%。该研究为制定苦玄参药材质量检测标准提供了简便、快速、准确的方法。  相似文献   
4.
苦玄参的化学成分研究   总被引:1,自引:1,他引:0  
对广西传统的抗菌消炎药用植物苦玄参进行了化学成分研究,采用柱色谱进行分离纯化,运用波谱法进行了结构解析,共鉴定得到7个化合物。它们分别为:芹菜素(1)、芹菜素-7-O-β-D-葡萄糖酸(2)、芹菜素-7-O-α-L-吡喃鼠李糖基(1→2)-β-D-吡喃葡萄糖酸(3)、迷迭香酸(4)、苦玄参苷Ⅳ(5)、苦玄参苷Ⅹ(6)、阿克替苷(7)。其中化合物2、3、4为首次从该植物中分离得到。  相似文献   
5.
苦玄参苷类成分的积累动态研究   总被引:2,自引:0,他引:2  
利用高效液相色谱技术,对不同生长期的苦玄参样品进行分析,以揭示苦玄参苷类成分的积累动态规律。在对苦玄参植株生长情况进行观察的基础上,收集不同生长期的苦玄参样品,通过高效液相色谱法仪测定其中有效成分的含量,并进行色谱图比较及数据分析。结果表明:苦玄参总苷、苷IA和IB的含量随着生长周期的变化基本上呈现一致性,苦玄参苷IA和IB的含量均在75d达到整个生理期的最高峰,随后缓慢下降,但在果期前期(即120d)两者含量再次出现次高峰,此时的生物量达到最大。由此可以确定苦玄参药材最佳采收期应在果期前期进行采收。  相似文献   
6.
In our search for bioactive compounds from the whole plant of Picriafelterrae Lour., three new phenylethanoid glycosides, picfeosides A-C (1-3), along with five known phenylethanoid glycosides,namely wiedemannioside (4), acteoside (5), acteoside isomer (6), cis-acteoside isomer (7), and cis-acteoside (8), were isolated using several chromatographic purification steps, including semipreparation HPLC on RP-18. The structures of the new compounds were elucidated on the basis of extensive spectroscopic analysis.  相似文献   
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